慢病毒浓缩试剂(5x)说明书

慢病毒浓缩试剂(5x)说明书

产品详情

货号

规格

价格

78EG10002-100ml

100ml

750.00

 

产品描述

慢病毒浓缩试剂(5x)是针对慢病毒富集而优化的聚合物材料,它提供了一种简单、快速、高效的慢病毒颗粒浓缩方法。只需将慢病毒上清液与慢病毒浓缩试剂按比例混合,短时间孵育,采用标准离心机进行离心即可得到慢病毒颗粒沉淀。超滤、超速离心法等病毒浓缩法,操作时间长,步骤繁琐,且通常会有细胞碎片和血清蛋白等的污染,病毒纯度低。使用本产品进行病毒浓缩后,病毒滴度可提高10-100倍,病毒回收率最高可达约90%,病毒损失少,并且病毒在浓缩过程中能保持病毒生物活性。整个实验过程可在4小时内快速完成,无需超速离心即可获得出色的回收效率。

产品特点

 简单快速——操作简单,无需超速离心,确保活性,实验耗时不超过4小时

  浓缩效果优——病毒滴度可浓缩10-100倍以上

  回收效率高——慢病毒回收效率高达90%以上

  应用范围广——适用于所有类型的慢病毒颗粒

使用方法

使用方法

1.将含有慢病毒颗粒的培养基转移至无菌容器中,300xg离心10分钟以除去细胞碎片。

  Ø为保证病毒活性,浓缩前的病毒上清液应尽量选择新鲜收集的病毒原液。

  2.使用0.22μm过滤器过滤上清液至无菌容器中。

  Ø如果使用滤膜过滤,推荐使用低蛋白结合力的纤维素醋酸酯或聚醚砜(PES)膜,不推荐使用硝酸纤维素膜(NC)。

  3.向每4体积含慢病毒的上清液中加入1体积慢病毒浓缩试剂(5x),使慢病毒浓缩试剂(5x)稀释为工作浓度(1x)。

  4.将上述混合物于4℃摇床中慢速孵育3小时或过夜。

  Ø慢病毒颗粒在4℃可稳定长达4天。

  5.将混合物4℃4000xg离心25分钟。离心后,慢病毒颗粒可能在容器底部显示为米色或白色沉淀。

  6.小心弃去上清液,4℃4000xg离心5分钟,再次弃尽残余液体,应尽量避免吸走沉淀物,该沉淀物即为慢病毒颗粒。

  7.用初始体积(原上清液体积)1/10-1/100预冷的慢病毒保存液重悬病毒颗粒,使用移液器小心吹打,重悬慢病毒颗粒。

  Ø重悬病毒沉淀时,吹打操作要轻柔,可选择慢病毒保存液(LS110R)、Complete medium或FBS重悬慢病毒。

  8.小体积分装慢病毒,储存于-80℃冰箱或液氮中,留取少量病毒测定滴度。

  Ø应尽量避免慢病毒反复冻融,否则会降低病毒滴度。

实验案例分析

 

注意事项

 1.为了您的健康安全,请规范操作,穿戴实验服与手套开展实验;

  2.所有慢病毒操作均需在生物安全柜(BSL2级)中进行;

  3.本产品仅供科研使用,请勿用于临床诊断及治疗。

运输及保存方法

冰袋(wetice)运输。4℃保存,有效期12个月。

产品描述

细胞周期(cell cycle)是指连续分裂的细胞从一次分裂完成开始到下次分裂为止的全过程,分为间期和分裂期(M期),细胞间期又分为休眠期(G0期),DNA合成前期(G1期),DNA合成期(S期),DNA合成后期(G2期)整个周期可以表示为:G0-G1-S-G2-M。

本公司生产的细胞周期检测是通过经典的碘化丙啶染色色 (Propidium iodide staining,PI staining)方法进行周期分析的检测试剂盒。PI是一种DNA的荧光染料,可以结合双链DNA产生荧光,其荧光强度与DNA的含量成正比。经碘化丙啶染色后假设G0/G1期细胞的荧光强度为1,那么含有双份基因组DNA的G2/M期细胞的荧光强度的理论值为2,正在进行DNA复制的S期细胞的荧光强度为1-2之间。凋亡细胞由于细胞核发生浓缩以及发生DNA片段化导致部分基因组DNA片段在染色过程中丢失,因此凋亡细胞碘化丙啶染色后呈现明显的弱染,即荧光强度小于1,在流式检测的荧光图上出现所谓的sub-G1峰,即凋亡细胞峰。利用流式细胞仪进行荧光分析从而对DNA进行定量,实现细胞周期检测。

产品组成

本试剂盒常用于贴壁细胞或者悬浮细胞的培养,如果检测对象为组织样品,必须消化成单个细胞后在进行染色检测,规格为50T,每T可检测的样本的细胞数量在10-100万之间。

 

 

 

名称

规格

保存条件

染色缓冲液

25 mL

-20℃

碘化丙啶染色液(20X)

1.25 mL

-20℃

RNase A (50X)

0.5 mL

-20℃

运输与保存

冰袋运输,-20℃保存一年。

实验步骤

1. 细胞样品的准备:

a. 对于贴壁细胞:收集培养液上清,PBS润洗细胞一遍,胰酶消化细胞,加入前面收集的培养液终止消化,得到的细胞悬液1000g离心5min收集细胞沉淀备用。

b. 对于悬浮细胞:1000g左右离心3-5 min,沉淀细胞。

(如果细胞沉淀不充分,可以适当延长离心时间或稍稍加大离心力)

2.细胞固定:

1)向步骤1收集得到的沉淀中加入300 μL预冷的PBS,轻柔吹打混匀,轻柔涡旋的过程中滴加700 μL预冷的无水乙醇,最后于4℃固定30 min或更长时间。通常固定2 h或以上更能保证染色效果,固定12-24h可能效果更佳。

2)1000g左右离心5 min去除固定液,预冷PBS清洗一遍后再次离心,小心吸除上清,可以残留约50微升左右的PBS,以避免吸走细胞。轻轻弹击离心管底以适当分散细胞,避免细胞成团。

3. 细胞染色:

1)参考下表配制碘化丙啶染色液(配置好的碘化丙啶染色液4℃保存,宜当日内使用):

名称

1个样品

染色缓冲液

0.5 mL

碘化丙啶染色液(20X)

25 μL

RNase A (50X)

10 μL

总体积

0.535 mL

 

2)每个样品中加入0.5 mL的碘化丙啶染色液缓慢并充分重悬细胞沉淀, 37ºC避光孵育30min。随后可以4ºC或冰浴避光存放。染色完成后宜在24 h内完成流式检测。

4.流式检测分析:检测激发波长为488 nm处红色荧光,用流式细胞仪对DNA含量进行分析,确定细胞周期变化情况。

注意事项

(1)需自备PBS70%乙醇,整个过程避光操作。

2)为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套。

3)本产品仅作科研用途!